Structural and Functional Characterisation of TRP channels

Abstract

Die Familie der TRP-Rezeptorkanäle (TRP= ‘’transient receptor potential“) umfasst in Säugergewebe 28 Mitglieder, welche in 6 Subfamilien untergliedert sind: TRPC, TRPM, TRPV, TRPA, TRPP und TRPML. TRP-Kanäle spielen in verschiedenen physiologischen, sowie pathologischen Prozessen eine wichtige Rolle. In dieser Arbeit lag der Fokus zum einen auf dem TRPM4-Kanal, welcher zu der TRPM Subfamilie gehört und zum anderen auf den TRPC1- und TRPC4- Kanäle, welche der TRPC Familie zugeordnet werden können. TRPM4 ist ein Kalzium-aktivierter, nichtselektiver Kationen-Kanal. Jüngste Studien legen nahe, dass TRPM4 als potentielles therapeutisches Ziel für eine Reihe erblich bedingter Herzrhythmusstörungen dienen kann. Mutationen im TRM4-Gen sind mit atrioventrikulärem (AV) Block im Kindesalter, familiärer progressiver kardialer Reizleitungsstörungen (Typ I) sowie dem Brugada-Syndrom assoziiert. Allerdings sind bis heute nur wenige dieser Mutationen gut untersucht und der zugrundeliegende Pathomechanismus ist nach wie vor unklar. Im ersten Teil dieser Arbeit wurden zum einen UV-Blitzlicht-Photolyse von „caged“ Kalzium und quantitatives Kalzium-, sowie elektrophysiologische Messungen durchgeführt, um die Eigenschaften von TRPM4- Kanälen detailliert zu analysieren. Die Ergebnisse zeigen, dass die TRPM4A432T Mutation, welche mit einer erblichen Herzrhythmusstörung assoziiert ist, mit einer zweifach höheren Stromdichte und einer vierfach verlangsamten Kalzium-abhängige Deaktivierung einhergeht. Diese Veränderungen scheinen für die pathologische Aktionspotenzialform verantwortlich zu sein. In dieser Arbeit konnte ich im Zusammenspiel von Experiment und molekularer Modellierung erstmalig aufzeigen, dass die Größe der Aminosäure an Position 432 eine substanzielle Determinante für das Deaktivierungsverhalten des TRPM4 Kanals ist. Weiterhin habe ich mit Hilfe der UV-Blitzlicht Analyse systematisch 9 weitere humane TRPM4-Mutationen untersucht. Dabei konnte gezeigt werden, dass 5 Mutationen veränderte TRPM4-Eigenschaften auswiesen (Kalzium-Empfindlichkeit, Aktivierung und Deaktivierung, veränderte Membranströme). 4 TRPM4-Mutationen hatten keinen Einfluss auf die von mir untersuchten TRPM4-Eigenschaften. TRPC-Kanäle besitzen die Fähigkeit, Homo-, oder Heterotetramere-Kanalstrukturen zu bilden. Das TRPC4/TRPC1-Heterotetramer wurde bereits ausführlich beschrieben und weist im Vergleich zu TRPC1 oder TRPC4 Homomeren sehr unterschiedliche biophysikalische Eigenschaften auf. Durch die Mangan-Quench und Patch-Clamp Methoden konnten im zweiten Teil der Arbeit gezeigt werden, dass das TRPC1- Homotetramer keine Rezeptor-aktivierten Kanäle bilden. Im Gegensatz dazu kann TRPC1 mit TRPC4 interagieren und bildet dann einen heteromeren Kanal (TRPC4/TRPC1-Kanal). Dieser zeigte allerdings im Gegensatz zum TRPC1 Homomer einen verringerten Kalzium-Einstrom. Um die molekularen Hintergründe für dieses charakteristische Merkmal von TRPC4/TRPC1 weiter zu untersuchen, wurden chimäre Kanalproteine, TRPC1C4Pore und der TRPC4C1Pore erzeugt. Dieser Ansatz wurde gewählt um zu zeigen, dass die Porenregion von TRPC1 entscheidend für die physikalischen Eigenschaften des TRPC4/TRPC1-Heteromerkanals ist (z.B. Stromstärke, Kalzium-Permeation). Zudem konnte ich in dieser Arbeit darlegen, dass die G-S-Mutation im S4-S5-Linker von TRPC1 den Kalzium-Einstrom des TRPC4/TRPC1-Kanal-Komplexes erhöhen kann. Zusammenfassend liefern die in dieser Arbeit gewonnenen Ergebnisse nicht nur neue Einblicke in den Pathomechanismus von mutierten TRPM4-Kanals bei erblich bedingter Herzleitungsblockade, sondern deckten neue Ätiologien für humane Herzrhythmusstörungen auf. Diese neuen Ätiologien stellen potenzielle Zielmechanismen für neuartige Medikamente zur Behandlung dieser erblichen Herzrhythmusstörungen dar. Die hier von mir vorgestellten neuen Ergebnisse zum TRPC4/TRPC1 Kanal tragen zum Verständnis der Porenregion sowie des S4-S5- Linkers von TRPC1 im TRPC4/TRPC1-Heteromer bei.

The transient receptor potential (TRP) family includes 28 mammalian members, which have been categorized into six subfamilies: TRPC, TRPM, TRPV, TRPA, TRPP and TRPML. TRP channels play an important role in various physiological and pathological process. In this study, I focused on the TRPM4 channel a membrane of the TRPM subfamily and TRPC1 and TRPC4 channels from the TRPC subfamily. The TRPM4 channel is a Ca2+ activated, non-selective cation channel. Recently, studies suggested that TRPM4 could be a potential target for inherited human cardiac conduction blocks. Childhood atrioventricular block, isolated cardiac conduction disease and progressive familial heart block type I as well as the Brugada syndrome are associated with mutations in TRPM4 gene. However, only a few of these mutations have been well studied and the underlying pathological mechanism is still not understood. In the first part of my thesis, I used UV-flash photolysis of caged Ca2+, quantitative Ca2+ and electrophysiological measurements to investigate the properties of such TRPM4 channels. My results showed that the TRPM4A432T mutation, associated with isolated cardiac conduction disease, caused a two-fold increased current density and a four-fold slower deactivation which are most likely responsible for the increased membrane currents during human cardiac action potentials. Furthermore, I found that it is the bulkiness of the amino acid at position 432 that rendered TRPM4’s aberrant gating. Moreover, using the UV-flash approach, I systematically studied nine additional identified human TRPM4 mutations and revealed that five of them altered TRPM4’s properties including Ca2+ sensitivity, activation and deactivation gating as well as the maximal membrane current density, while four of them exhibited no apparent influence on TRPM4’s properties. TRPC channels are known to form tetrameric structures, such as homotetramers or heterotetramers. The TRPC4/TRPC1 heterotetramer has been widely reported and displays totally different biophysical properties when compared to TRPC1 or TRPC4 homotetramers. In the second part of my thesis, using the Mn2+ quench and patchclamp, I found that TRPC1 homotetramers failed to form receptor-activated channels, while TRPC1 could interact with TRPC4 to form a heteromeric channel TRPC4/TRPC1, that displayed less Ca2+ influx in comparison to TRPC4 homotetramers. To further investigate the molecular determinants for these distinctive characteristics of TRPC4/TRPC1, I used the chimeras TRPC1C4Pore and TRPC4C1Pore demonstrating that the pore region of TRPC1 is crucial for preserving the TRPC4/TRPC1 heteromeric channel’s physical properties such as its current amplitude, I-V relationship and Ca2+ permeation. Moreover, I found that the G-S mutation in the S4-S5 linker of TRPC1 could increase the Ca2+ permeation of the TRPC4/TRPC1 channel complex. In summary, these results from TRPM4 channels not only provide new insights into the pathological mechanisms of TRPM4 mutants in hereditary cardiac conduction blocks, but also reveal new etiologies for human cardiac arrhythmia. These new etiologies could be potential targets for novel drugs to treat these hereditary cardiac arrhythmias. These new results from the TRPC4/TRPC1 channels presented here make a contribution to understand roles of the pore region and the S4-S5 linker of TRPC1 in the TRPC4/TRPC1 heterotetramer.